在CRISPR/Cas9基因组编辑实验中,如果你已经构建好了gRNA表达载体,并利用Cas9将它引入了目标细胞,那么恭喜你!成功就在眼前,指日可待。下一步,你还要验证一下,看看细胞的编辑是否如你所愿。在此,一些专家给你提了一些建议。
验证的方法将因物种和编辑类型而异。在这里,我们主要关注二倍体的哺乳动物细胞,不过许多原理也同样适用于其他的模式生物。
在细胞中引入Cas9和gRNA,将带来混合的细胞群体。双链断裂(DSB)产生之后,细胞内的修复机制通过非同源末端连接(NHEJ)或同源定向修复(HDR)来起作用。哺乳动物细胞的修复以NHEJ为主,这就带来了插入缺失的错误。不过引入的插入缺失存在异质性,而等位基因编辑的频率也有所不同。有的细胞没有被编辑,有的只有一个等位基因被编辑,而有的则有两个。同源定向修复则需要修复模板的存在。
验证过程的第一步是快速评估是否有一定量的细胞被编辑。对于插入缺失而言,可通过错配切割分析来观察。对于HDR,往往可通过限制图谱的改变或报告基因的读数来观察。对于缺失,你可以通过特殊设计的PCR引物来判断。
一旦你知道有一部分细胞经过了编辑,那么你可以继续创建克隆细胞系。利用连续稀释,来分离单个细胞,接着进行扩增产生细胞系。如果你的质粒上有荧光蛋白的标记,那么可通过FACS来富集含有Cas9和gRNA的细胞。扩增后,分析每个细胞系,并测序目的区域,以验证编辑是否如你所愿。如果可能,你还可以开展western blot。
错配切割分析
错配切割分析是一种快速而简单的插入缺失检测方法。此过程中通常使用Surveyor核酸酶,因为它切割DNA双链3’端的任何错配。它能够检测多达12个核苷酸的插入缺失,对频率低至1/32的突变敏感。
此分析通常包含四个步骤:1. PCR扩增目标区域;2. 变性并再次杂交,让突变型和野生型的链退火;3. 用Surveyor核酸酶处理退火的DNA,以切割异源双链;4. 琼脂糖凝胶电泳分析DNA。在这个例子中,两个+gRNA的泳道都包含了预期大小的片段,表明gRNA成功产生了插入缺失。这种分析通常是半定量的,你可以看出gRNA1似乎比gRNA2更有效。
检测同源定向修复
如果你希望利用HDR来实现突变,那么你最好先确定gRNA是否能高效切开你的目标序列。这可以参考上面的错配切割分析。一旦你选择了最佳的gRNA,就可以引入它和Cas9以及你的修复模板。
在设计你的HDR修复模板时,事先要计划好整合事件的检测。举个例子,你需要有目的地引入或删除限制性酶切位点,这会改变PCR产物的酶切。或者,你加入一个报告元件,以便在DNA、RNA或蛋白水平检测HDR。如果整合了大的插入或缺失,那么也可通过PCR产物的大小变化来检测。如果单核苷酸的变化引入或删除了限制性酶切位点,那么可通过酶切来快速判断。否则,只能通过Sanger测序、新一代测序或数字PCR来检测。
HDR事件的频率往往不及插入缺失,因此你可能需要筛选比较多的克隆。这个具体数量要取决于你的转染效率和HDR频率。如果你的转染效率是40%,而HDR频率是5%,那么2%的细胞将产生重组区域。因此,你至少要筛选50个克隆。如果你能够利用标记选择出成功转染的细胞,那么筛选的数量就能大大减少。
通过PCR来检测缺失
大多数的缺失是利用两个gRNA来创建的,它们指导Cas9来切割DNA的中间区域。因此,缺失可以通过PCR来检测,扩增时使用在缺失区域两侧的引物。在这个例子中,我们可以看出,克隆1、5和7是缺失的杂合子,而克隆4是缺失的纯合子。
新一代测序也是个选择
当然,如果你的实验室有资源,你也能利用新一代测序(NGS)来定量评估基因组编辑。当你有大量的样品,或希望同时检测脱靶效应,那么NGS是个好的选择。在使用这种方法时,你需要有一组对照细胞,这样你才能比较编辑前和编辑后样品的测序读取。CRISPResso等软件能帮助你开展数据分析。
值得一提的是,这篇文章中的方法并不是只针对CRISPR的,同样适用于TALEN或锌指核酸酶的编辑。无论你采用什么方法,验证编辑的时间都是值得花的。磨刀不误砍柴工!
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