每次要将手/样品伸进细胞培养箱，生物培养平台D 中时，都要喷洒酒精消毒。
以两个样品/两个培养基为例
- 从细胞培养箱（37度，5%CO2浓度）取出要染色的细胞；放在显微镜下观察，观察细胞是否趴壁以及细胞密度是否符合要求；将装有细胞的培养皿放在
D生物培养台上； - 活染步骤；从-20度冰箱中取出需要用的
染色剂A，B；将A，B放在C上振荡（但振荡会导致染色剂贴壁，而我们并不希望其贴壁）；再将A，B放在微型离心机中旋转使其解冻并不贴壁（振动中的不贴壁）；观察管中染色剂直至完全融化；将染色剂A，B放在D上； - 准备好废液缸，从4摄氏度冰箱取出PBS溶液（什么成分）；使用1000uL移液枪将培养皿中细胞培养基转移到废液缸中（如果碰到难以吸取的部分，则倾斜培养皿，先吸外圈的液体，再从内圈边缘吸取剩余液体；如果转移途中由于摇晃过于厉害出现细胞培养基挂壁现象，由于培养基过于粘稠，则用纸巾擦拭基壁）；吸取1000uLPBS溶液，从培养基外圈注入，完全注入后轻微摇晃培养基至液体完全覆盖内圈；静置5分钟（
并没有静置，不知道为什么）；用PBS重复清洗（这一步骤叫清洗吗？）三次；注意事项：移液枪枪管不要碰到平台；移液枪枪管每次步骤都要更换，不要污染PBS； - 配置染色剂；取15mL灭菌离心管，从4摄氏度冰箱取出细胞培养基（什么成分）放入D中；取2000uL细胞培养基到15mL离心管中；（按1:1000配比来染色）取2uL A到15mL离心管中，并在离心管中进行吹打（吹打指：将移液枪中溶液注入再吸上，再注入再吸上，进行若干次至溶液完全融合，需要时刻注意避免过程中产生气泡）；取2uL B到离心管中，吹打；注意事项：实际情况中为了避免染色剂不够用，我们想使用2000uL染色剂，实际会配置2500uL染色剂；
- 取1000uL培养基到其一培养皿中，再取1000uL培养基到另一培养皿中；将两个培养皿放到细胞培养箱中，放置30min（由于细胞还活着所以要放到合适温度，二氧化碳浓度中；箱中无光所以不需要避光）；
- 死染步骤；从4摄氏度冰箱中取出细胞固定剂（
叫什么来着，甲醛？）；由于细胞固定剂比较脏，我们在D中进行操作，取出5000uL细胞固定剂到15mL离心管中；将离心管进行离心（注意对称离心；离心的目的是将离心管中脏的部分到底部，而让上清液尽量干净）；将离心管小心取出，平稳地转移到D中；取出2500uL上清液到另一干净离心管中 ，将脏的细胞固定液倒掉管子扔掉；将染色剂E，F取出，解冻； - 30分钟后将细胞培养基取出，在显微镜下观察（不懂显微镜使用），观察荧光染色情况；
- （
这一步不太记得了）将培养基放入D中，将细胞培养基吸出；各注入1000uL细胞固定剂；使用锡箔纸遮光，放置30min；将细胞固定剂吸出，使用PBS清洗4次；使用2000uL+2uLE+2uLF配成染色剂，过程中注意吹打；各注入1000uL染色剂，遮光放置30min；将染色剂吸出，各注入1000uLPBS，用锡箔纸包住，去楼下用STED显微镜观察；
